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CRISPRs-Cas9基因編輯的原理


1987年日本研究人員在大腸桿菌基因組中發(fā)現(xiàn)了成簇的規(guī)則間隔回文重復序列CRISPRs(Clustered Regularly Interspaced Palindromic Repeats,CRISPRs)。2005年發(fā)現(xiàn)CRISPRs中的許多間隔序列與質(zhì)粒和病毒具有同源性,最后證實CRISPR-Cas是一種自適應的防御系統(tǒng),可以使用反義RNA作為過去被入侵的記憶標記,當病毒再次入侵時即可做出快速反應。接下來的研究發(fā)現(xiàn)一共存在三種CRISPR-Cas系統(tǒng)類型(I、II和III),它們分別使用不同的分子機制對核酸進行識別和剪切。I型和III型系統(tǒng)使用大量復雜的Cas蛋白作為crRNA介導的DNA剪切,由于其過于復雜,具體應用難度很大。然而,II型系統(tǒng)只需要一個單一的蛋白質(zhì)Case9,既可以實現(xiàn)基因的剪切,簡單方便,后來被證明對基因組工程非常有用,現(xiàn)在被廣泛應用于基因編輯和基因治療。
 
 
圖1 鏈球菌CRISPRs-Cas9抵抗病毒入侵的機制
 
上圖是鏈球菌的CRISPRs-Cas9抗病毒防御機制,Cas9是一種RNA引導的DNA核酸內(nèi)切酶,其需要在crRNA和tracrRNA雙RNA的指導下對特定DNA序列進行識別和切割。在CRISPR在基因座里包括tracrRNA、Cas9還有短的重復序列基因(如圖1a)。它們發(fā)揮作用的具體過程如下:短的重復序列基因轉(zhuǎn)錄成pre-crRNA,而tracrRNA對于pre-crRNA的成熟是必須的,Cas9具有核酸剪切能力。它們首先結合形成復合物,在核糖核酸酶Ⅲ作用下進一步成熟(如圖1b)。由于crRNA上的20個堿基能與目標DNA的堿基進行互補配對,可將復合物導向目標DNA,隨后Cas9對目標基因PAM序列(PAM序列為NGG,N為任意堿基)前的DNA序列進行剪切,導致目標DNA斷裂形成DSB(DNA double-stranded break,DBS)使入侵的病毒基因組發(fā)生斷裂(如圖1c),導致病毒死亡,進而抑制病毒感染。人們利用這種機制,通過尋找目的基因特異的PAM序列,將其5‘端前20個堿基一起合成crRNA,然后將tracrRNA和crRNA改造成單鏈導向的sgRNA(single guide RNA,sgRNA)(圖2)。同時共轉(zhuǎn)染Cas9,實現(xiàn)對目的基因的剪切。
 
 
 
圖2  改造后的CRISPs-Cas9系統(tǒng)
 
 然后利用生物體內(nèi)基因DBS的兩種修復方式對目的基因?qū)崿F(xiàn)編輯。具體兩種修復方式包括非同源重組修復(NHEJ)和同源重組修復(HDR)見圖3,NHEJ方式的修復會導致目的基因堿基的增加或缺失,導致基因可能發(fā)生移碼突變,達到基因敲除的目的。而HDR修飾是利用基因同源臂(如等位基因作為模板)可以進行同源重組所以可以進行精確修復,這樣人們可以通過外轉(zhuǎn)具有相同同源臂的質(zhì)粒,在同源臂內(nèi)插入基因就可以實現(xiàn)對目標基因的替換,進而實現(xiàn)基因編輯。
CRISPs-Cas9技術對基因編輯具有操作簡單、成本低、編輯效率較高等優(yōu)點,已經(jīng)被廣泛應用于疾病、腫瘤等治療,但是目前還存在脫靶效應、傳遞效率低、免疫排斥、倫理等問題。
 
 
圖3 基因組基因斷裂修復的兩種方式
 
 
主要參考文獻:Doudna, Jennifer A., and Emmanuelle Charpentier. "The new frontier of genome engineering with CRISPR-Cas9." Science 346.6213 (2014): 1258096.